0 просмотров
Рейтинг статьи
1 звезда2 звезды3 звезды4 звезды5 звезд
Загрузка...

2 лабораторные методы исследования

2 лабораторные методы исследования

■ у мужчин при однократном заборе мочи — рост одного вида микроорганизмов в количестве ≥ 10 3 КОЕ/мл мочи;

■ образцы мочи, взятые катетером, — определение одного вида микроорганизмов в количестве ≥ 10 2 КОЕ/мл при однократном заборе мочи.

Гематурия — присутствие в моче эритроцитов (3 и более в поле зрения). Гематурия может бытьмикроскопической (эритроцитурия) имакроскопической (определяемой визуально). Моча, содержащая большую примесь крови, может иметь различную окраску: цвета клюквенного морса, мясных помоев.

Гематурия — чрезвычайно важный симптом, наблюдаемый при ряде урологических заболеваний. Особенно должна настораживать врача так называемая «безболевая» макрогематурия, нередко являющаяся симптомом злокачественных заболеваний органов мочевой системы. Следует помнить, что примесь крови в моче может быть обусловлена также приемом различных лекарственных препаратов (антикоагулянты), пищевых продуктов, заболеваниями крови и т. д.

Для выяснения местонахождения патологического процесса, вызвавшего гематурию, применяется трехстаканная проба. Больной мочится в три контейнера. Наличие крови в первой порции мочи (инициальная гематурия) говорит о локализации патологического процесса в мочеиспускательном канале (уретрит, рак, камень уретры). При патологии шейки мочевого пузыря и предстательной железы наблюдается терминальная гематурия — в конце мочеиспускания.

Равномерное окрашивание всех порций мочи может свидетельствовать о патологии мочевого пузыря и верхних мочевых путей (опухолях почки, почечной лоханки, мочевого пузыря, специфическом воспалительном процессе, мочекаменной болезни и др.). Характер кровяных сгустков также позволяет предположить источник кровотечения: червеобразные сгустки говорят о кровотечении из верхних мочевых путей, бесформенные образуются в мочевом пузыре.

В клинической практике также пользуются методами количественного подсчета форменных элементов в суточном объеме мочи (Каковского-Аддиса), в 1 мл мочи (Нечипоренко) и за 1 мин (Амбюрже). При исследовании форменных элементов кровиметодом Каковского-Аддиса производят подсчет форменных элементов в суточной моче (в норме количество лейкоцитов не превышает 2 х 10 6 ; эритроцитов — 1 х 10 6 , цилиндров — 2 х 10 4 ).Метод Амбурже предполагает исследование мочи, собранной в течение 3 часов. Более распространенным является подсчет форменных элементов крови в мочеметодом Нечипоренко. Количество эритроцитов и лейкоцитов определяют в 1 мл мочи. Мочу для исследования берут из средней порции. В нормальном анализе мочи в 1 мл обнаруживают не более 2000 лейкоцитов и 1000 эритроцитов, цилиндры отсутствуют.

При гемоглобинурии моча имеет красноватую, иногда буро-коричневатую окраску вследствие содержания в ней свободного гемоглобина, метгемоглобина. Гемоглобинурия может наблюдаться при отравлениях, ожогах, переливании несовместимой крови.

Миоглобинурия — характеризуется наличием в моче миоглобина, придающего ей красноватую окраску. Миоглобинурия наблюдается при синдроме длительного сдавления.

Клетки эпителия. Наличие в моче нормальных эпителиальных клеток обычно не имеет диагностического значения. Это клетки либо почечного эпителия, либо слизистой оболочки мочевого пузыря, почечной лоханки. Обилие клеток плоского эпителия говорит о неправильно собранном анализе мочи. Диагностическое значение имеет нахождение в свежевыделенной мочеатипичных клеток, что служит сигналом к проведению комплексного урологического обследования больного.

Цилиндрурия — наличие в моче цилиндров из белка или клеточных элементов, образующихся в просвете почечных канальцев. Выделяютзернистые, гиалиновые, восковидные, эпителиальные, эритроцитарные илейкоцитарные цилиндры. Их обнаружение в моче говорит о наличии патологии почек.

В моче могут быть обнаружены сперматозоиды; обычно их находят в моче, собранной вскоре после эякуляции, или при сперматорее. Сперматозоиды в моче могут быть следствием ретроградной эякуляции, наблюдаемой после оперативных вмешательств на предстательной железе.

Пневматурия — наличие газа в моче; наблюдается при кишечно-пузырном свище, газообразующей инфекции мочевых путей, после инструментальных вмешательств на мочевом пузыре.

Исследование мочи на PCA 3. Новым перспективным методом диагностики является исследование мочи наPCA 3специфический генный маркер рака предстательной железы. По сравнению с сывороточными значениями ПСА уровень РСА 3 в моче оказался более специфичным в диагностике рака простаты. В отличие от ПСА крови уровень РСА 3 в моче менее подвержен влиянию таких факторов, как доброкачественная гиперплазированная предстательная железа, простатит, использование ингибиторов 5-α-редуктазы и др.

Приложение 2. Лабораторные методы исследования

Лабораторные методы исследования

1. Определение количества клеток в молоке

а) Метод Прескотта и Брида. Чистое предметное стекло кладут на лист бумаги, расчерченный на квадраты со стороной 1 см. Пробу молока (секрета) тщательно перемешивают, затем микропипеткой наносят на каждый квадрат предметного стекла 0,005 мл молока (секрета) и тщательно распределяют на площади квадрата. Мазок высушивают на воздухе, фиксируют метиловым спиртом или спирт-эфиром (лучше изобутиловым спиртом) в ванночке при вертикальном положении мазка, окрашивают 15-20 минут по Романовскому-Гимза (на 1 мл дистиллированной воды 1-2 капли краски). Вместо краски Романовского-Гимза можно окрашивать мазки по Ньюмансу раствором следующего состава: спирт абсолютный — 50 мл, хлороформ — 50 мл, ледяная уксусная кислота — 20 мл, фуксин основной — 0,1 г, метиленовая синь — 1 г.

Краски растворяют в смеси спирта и хлороформа, нагретой до 50°С. После охлаждения до комнатной температуры в раствор добавляют ледяную уксусную кислоту и выдерживают в течение 18 часов, а затем используют для окрашивания. После окрашивания препарат сушат и промывают трехкратно теплой водой (37-40°С). Мазок тщательно высушивают и просматривают под микроскопом.

В каждом мазке рассматривают по 100 полей зрения. Подсчитанное число клеток умножают на коэффициент для пересчета с учетом объектива и окуляра (для советского микроскопа МБ-1 при объективе 90 и окуляре 7 этот коэффициент равен 6260, при окуляре 10 — 10 200, при окуляре 15 — 33 200).

б) Камерный метод. Подсчету клеток в камере препятствуют жировые шарики, которые необходимо предварительно растворить синтанолом ДС-10.

К 100 мл 0,9%-ного раствора хлористого натрия добавляют 1% формальдегида, 12,5% этилового спирта и 1% синтанола ДС-10 и нагревают при 60°С в течение 20 минут. После растворения добавляют 1% насыщенного спиртового раствора основного фуксина и фильтруют через бумажный фильтр. В связи с тем, что при длительном хранении краситель из раствора выпадает, его добавляют к солюбилизирующему раствору непосредственно перед применением. Раствор солюбилизатора в герметическом сосуде сохраняется длительное время.

Для подсчета клеток в пробирки, содержащие 10 мл солюбилизирующего раствора с красителем, добавляют 0,1 мл молока, тщательно перемешивают и прогревают 30 минут на водяной бане при 80°С. После перемешивания каплю жидкости вносят под покровное стекло счетной камеры Фукса-Розенталя (при отсутствии последней можно использовать камеру Горяева, Тома, Предтеченского, Бюркера и т.д.). Подсчет клеток ведут под микроскопом при объективе 10Х-20Х. В поле зрения на прозрачном фоне видны четко прокрашенные клетки, легко поддающиеся подсчету.

2. Определение каталазы с помощью всплывания диска

Из хроматографической бумаги марки Ф-1 готовят диски диаметром 12 мм. Делают 3%-ный раствор перекиси водорода на 15 М фосфатном буфере pH 7,2 (готовят в день проведения пробы).

Анатомическим пинцетом захватывают бумажный диск и погружают его в тщательно смешанную пробу молока. Для удаления излишков молока диск поворачивают в вертикальное положение и, притрагиваясь к стенкам пробирки, как бы вытирают его. После этого диск погружают в раствор перекиси водорода, которого наливают 5 мл в пробирку размером 60х16 мм. Время, прошедшее от момента погружения диска в раствор до всплытия его на поверхность, отмечают по секундомеру.

Читать еще:  Бандаж после операции простаты

При малом содержании клеток в молоке (до 100 тыс./мл) время всплытия диска равно 1-5 минутам, иногда больше.

При увеличении содержания лейкоцитов в молоке свыше 200 тыс./мл диск всплывает за 30-35 секунд. При заболевании маститом диск всплывает за 3-7 секунд или моментально. Данный метод определения каталазы можно использовать при проведении массовых исследований проб молока от коров непосредственно в хозяйствах.

3. Определение лизоцима молока

Из каждой четверти вымени в конце доения в стерильные пробирки надаивают по 5-10 мл молока. На подсушенный МПА (pH 7,2) в чашках Петри (по одной на каждую корову) высевают суточную бульонную культуру золотистого стафилококка штамма ВМ. Для этого культуру разводят физиологическим раствором 1:10 000, по 0,3-0,4 мл равномерно распределяют на агаре в чашках и оставляют на 30-40 минут на горизонтальной поверхности. В агаре каждой чашки делают 4 луночки диаметром 10 мл (пробочником N 5). В каждую луночку вносят стерильной пипеткой по 0,1 мл (2 капли) молока. Чашки выдерживают при комнатной температуре (18-22°С) 18 часов, а затем помещают в термостат на 5-6 часов. Если молоко содержит лизоцим М, то вокруг луночки наблюдается задержка роста стафилококков в виде кольца. По диаметру кольца задержки роста микроба определяют титр лизоцима в молоке. Задержка роста меньше 16 мм — молоко от коровы, больной маститом, 17-24 мм — сомнительное, более 25 мм — от здоровой коровы.

Для выявления и дифференциации основных возбудителей маститов необходимо проводить бактериологическое исследование секрета вымени.

Молоко (секрет) для бактериологического исследования отбирают непосредственно после доения в стерильные флаконы или пробирки с ватными пробками с соблюдением правил асептики. Для этого перед взятием молока (секрета) вымя подмывают и вытирают чистым полотенцем. Соски коровы и руки доярки протирают ватным тампоном, смоченным 70%-ным денатурированным спиртом. Нельзя допускать, чтобы сосок касался края посуды. Пробы отправляют в ветеринарную лабораторию, где их исследуют:

1) на чувствительность микрофлоры молока (секрета) к антибиотикам;

2) на наличие основных возбудителей мастита (патогенных стафилококков и агалактийного стрептококка).

Определение чувствительности микрофлоры молока к антибиотикам

Исследуемое молоко с соблюдением стерильных условий разливают по 2 мл в стерильные пробирки. Пробирок должно быть на две больше, чем дисков с антибиотиками.

В одной из пробирок определяют реакцию (pH) молока и добавляют в него 0,1 мл бромтимолблау (раствор бромтимолблау готовят так же, как и для диагностики маститов). В зависимости от pH молока смесь окрашивается от желтого (кислое молоко), салатного, зеленого до синего (щелочное молоко) цвета. Записав результат (цвет смеси), данную пробу исключают из опыта. В оставшиеся пробирки (кроме одной) добавляют по одному диску того или иного антибиотика.

Все пробирки с молоком выдерживают при 37°С в течение 18-20 часов в термостате или автоматически регулируемой водяной бане, после чего во всех пробирках проверяют кислотность молока раствором бромтимолблау.

Если кислотность молока в пробирке без антибиотиков до опыта и после выдерживания в течение 18-20 часов в термостате одинакова, патогенных бактерий в молоке нет. При наличии микрофлоры кислотность молока в пробирке без антибиотиков после выдерживания в термостате увеличивается. В этом случае проверяется кислотность молока в пробирках с антибиотиками.

Если кислотность молока с тем или иным антибиотиком (после выдерживания в термостате) не выше первоначальной (до выдерживания в термостате), значит, бактерии, находящиеся в молоке, высокочувствительны к данному антибиотику. Наоборот, если кислотность молока в пробирках с антибиотиками после выдерживания в термостате увеличивается, из этого следует, что находящиеся в молоке бактерии устойчивы к данному антибиотику, причем чем выше кислотность молока, тем устойчивее микроорганизмы.

Исследование молока (секрета) на наличие патогенных стафилококков и агалактийных стрептококков

Доставленные в лабораторию пробы молока (секрета) после смешивания высевают по 0,1 мл на мясопептонный агар, содержащий 5% отмытых эритроцитов барана (коровы), или на элективные среды: мясопептонный агар, содержащий 7,5% поваренной соли и 5% отмытых эритроцитов барана (коровы), для выделения стафилококков и среду В.М. Карташовой для индикации стрептококков. При отсутствии элективных сред можно использовать только 5%-ный кровяной МПА.

Для получения изолированных колоний 1-2 капли секрета наносят на край пластинки питательной среды в чашке Петри и растирают его по всей пластинке шпателем (согнутая над пламенем пастеровская пипетка). Засеянные чашки (крышкой вниз) выдерживают при температуре 37°С в течение 24 часов. Если на чашках получена однородная по морфологии популяция, для дальнейшего исследования достаточно брать по одной колонии с чашки. Если колонии на чашке различны по форме, размерам, окраске, типу гемолиза, следует брать по одной колонии каждого образца. Отобранные колонии отсевают и подвергают дальнейшему исследованию.

Исследование на наличие стафилококков. Большие и средние колонии белого, кремового и лимонно-желтого цвета, образующие хорошо выраженную зону гемолиза эритроцитов на кровяном агаре или на кровяно-солевом агаре, отсевают в пробирки, содержащие 3 мл мясопептонного бульона (лучше предварительно подогретый в термостате), и выращивают при температуре 37°С в течение 3 — 3 1/2 часов до помутнения.

Выросшие молодые бульонные культуры окрашивают по Граму и микроскопируют. При обнаружении стафилококков определяют их патогенные свойства реакцией плазмокоагуляции, лизоцимную и дезоксирибонуклеазную (ДНК-азной) активность и отношение к манниту, из которых реакции плазмокоагуляции и гемолиза строго обязательны.

Кровяно-солевой агар готовят следующим образом. Готовый (стерилизованный в автоклаве) МПА, содержащий 7,5% хлористого натрия, растапливают и охлаждают до 45°С. Прибавляют 5% отмытых эритроцитов барана или крупного рогатого скота, осторожно перемешивают, чтобы не образовывалось пены, и разливают в чашки Петри. Среду можно хранить в холодильнике в течение нескольких дней.

Реакция плазмокоагуляции служит основным методом определения патогенных стафилококков. Для этого кровь, взятую из сердца кролика, выливают в пробирку со стерильным раствором лимоннокислого натрия и центрифугируют.

Полученную плазму разводят стерильным физиологическим раствором в соотношении 1:4 и разливают в агглютинационные пробирки по 0,5 мл. 12-18-часовую бульонную культуру испытуемого стафилококка вносят по 2 капли в пробирки с разведенной плазмой. Для контроля в одну пробирку с плазмой не вносят культуры, а в другую засевают заведомо плазмокоагулирующий стафилококк. Пробирки помещают в термостат при 37°С и через каждый час в течение 3 часов учитывают результаты. При положительной реакции образовавшийся сгусток не выпадает из пробирки даже при переворачивании или плавает в плазме.

Кроме того, для выявления патогенных стафилококков применяют и другие методы.

Определение лизоцимной активности стафилококков. В качестве тест-культуры используют взвесь живой или убитой 15-минутным кипячением культуры Micrococcus lysodeicticus. Преимущество использования убитой культуры в том, что в этом случае можно пользоваться стандартным препаратом (взвесь убитых микробов можно хранить в холодильнике в течение месяца и более).

В пробирки с 15 мл растопленного и охлажденного до 50°С 0,7%-ного агара, приготовленного на переваре Хоттингера, вносят взвесь убитой культуры микрококка из расчета 1 млрд микробных клеток на 1 мл среды (по оптическому стандарту). При использовании живой культуры на 1 мл среды добавляют 100 млн микробных тел. Содержимое пробирок выливают в чашки Петри и на поверхность застывшего и подсушенного агара бляшками (размазанная петлей капля) наносят 3-4-часовые бульонные культуры испытуемых штаммов стафилококков. На одной чашке можно испытать 7-8 штаммов.

Читать еще:  Гормонотерапия при раке простаты лечение тестостероном

После инкубации посевов в течение суток при 37°С вокруг бляшек с ростом культур, продуцирующих лизоцим, появляются зоны лизиса, которые значительно увеличиваются после дополнительного пребывания посевов при комнатной температуре в течение 48 часов.

Определение дезоксирибонуклеазной (ДНК-азной) активности стафилококков. К 150 мл расплавленного стерильного готового 2%-ного МПА (pH 8,6) добавляют 300 мг дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК), то есть 2 мг/мл, предварительно растворенной в 15 мл подщелоченной 3 каплями 10%-ного раствора едкого натра дистиллированной воды. После перемешивания среду прогревают в течение 1/2 часа в кипящей бане. К немного остывшей среде добавляют 1,2 мл 10%-ного стерильного хлористого кальция, разливают в чашки, подсушивают и засевают бульонными культурами (штрихами). После 18-часовой инкубации при 37°С поверхность чашки заливают 7 мл 1 н. HCl, выдерживают 15 минут, сливают кислоту и учитывают результаты. Появление зон просветления (деполимеризация ДНК) вокруг культур указывает на положительную ДНК-азную реакцию.

Определение отношения к манниту. 3-4 капли испытуемой бульонной культуры стафилококка засевают в пробирку со средой, содержащей 0,5% маннита. В качестве такой среды можно использовать полужидкий агар с индикатором ВР (готовые, сухие среды) или жидкую среду с индикатором Андредэ. Изменение цвета индикатора после 24-часового инкубирования в термостате указывает на ферментацию маннита.

Исследование молока (секрета) на наличие патогенных стрептококков. При учете роста колоний на чашках Петри с кровяным или сывороточным агаром (второй день исследования) отсевают росинчатые мелкие однотипные колонии, характерные для роста стрептококков, на элективную питательную среду для стрептококков (среда В.М. Карташовой), которая готовится следующим образом: к 500 мл МПБ с pH 7,2-7,3 добавляют 2,5 г лактозы, 1 мл спиртового или водного раствора 1:100 бромкрезолпурпура (1 г порошка растворяют в 50 мл спирта и добавляют 50 мл дистиллированной воды). Затем МПБ ставят в водяную баню, доводят до кипения и кипятят 5-7 минут. После остывания до 50-55°С в колбу добавляют 50 мл стерильной сыворотки без консерванта и 0,5 мл раствора неомицина, в котором содержится 25 000 ЕД антибиотика (500 000 ЕД неомицина растворяют в 10 мл физиологического раствора). В стерильных условиях среду разливают по 5 мл в пробирки. Цвет ее сине-фиолетовый. Посевы инкубируют в течение 24 часов при 37°С.

Изменение сине-фиолетового цвета среды в лимонный или желто-зеленый указывает на рост стрептококков. Из пробирок с измененным цветом среды готовят мазки и окрашивают по Граму. При наличии стрептококков проводят их дальнейшую дифференциацию с помощью КАМП-теста.

Постановка КАМП-теста. Суточную культуру бета-гемолитического стафилококка высевают на агар с 5% крови крупного рогатого скота или барана. Посев делают петлей сплошной линией по диаметру чашки. Перпендикулярно к линии посева стафилококка, не доходя 5-6 мм, высевают ровным штрихом испытуемую культуру стрептококков. На одной чашке можно проверить 8-10 культур. Чашки помещают в термостат на 24 часа при 37°С. КАМП-тест считается положительным, если четко выражен гемолиз испытуемого стрептококка в виде усеченного треугольника или полукруга в зоне бета-гемолитического стафилококка.

Положительный КАМП-тест дают только агалактийные стрептококки. На этих же чашках кровяного агара учитывают и тип гемолиза стрептококков. Светлая зона вокруг штриха культуры стрептококков указывает на бета-гемолиз, зеленая зона — на альфа-гемолиз (зеленящие стрептококки).

Для дифференциации непатогенных стрептококков (группа D-фекальные стрептококки и группа N-молочнокислые стрептококки) делают высевы на бульон с 6,5% хлористого натрия, на бульон с 40% желчи крупного рогатого скота и на стерильное обезжиренное молоко с добавлением метиленовой сини 1:1000 (на 5 мл молока 0,5 мл 1%-ного раствора метиленовой сини). Посевы инкубируют в термостате при 37°С и на другой день проводят учет по следующей схеме:

Лабораторные обследования при различных заболеваниях

Правильный и вовремя поставленный диагноз — залог успешного лечения. Диагностика заболеваний — процесс сложный. Врач делает выводы о состоянии пациента, опираясь на собственные наблюдения, на общую клиническую картину, на данные различных инструментальных исследований. Важнейшим звеном в этой диагностической цепочке являются лабораторные методы обследования пациента.

Что такое лабораторное обследование и когда оно показано

Современная медицина располагает целым арсеналом высокотехнологичных методов, объединенных термином «лабораторная диагностика». Это физико-химические, биохимические и биологические методы исследования, с помощью которых можно анализировать состав и свойства биологических жидкостей и тканей человека, а также идентифицировать возбудителей заболеваний.

В общемировой практике лабораторное обследование находится на первом месте среди всех диагностических исследований и по частоте использования, и по объему предоставляемой информации. Достоверность результата анализа зависит от качества используемых в лаборатории тестов, реактивов, аппаратуры. Немаловажную роль играет также ответственность и профессионализм персонала.

Но как понять, какие методы лабораторного обследования дают наиболее точные результаты? Оценка и сравнение различных методик диагностики проводится на основе критериев чувствительности, специфичности и объективности лабораторного теста.

Чувствительность — это процент выявления истинно положительных результатов теста у больных определенной болезнью. Иными словами, чувствительность метода — это процент вероятности выявить заболевание у больного с помощью конкретного теста. Высокой чувствительностью обладают методы, способные измерять или выявлять изучаемое свойство при его минимальных количествах.

Специфичность теста определяется отсутствием ошибочных (ложноположительных) результатов. То есть чем выше специфичность метода, тем с большей долей вероятности он позволит подтвердить, что человек не болен.

Объективность анализа — это соответствие среднего значения результатов подлинной величине измеряемого параметра.

В идеале все тесты должны иметь чувствительность, специфичность и объективность на уровне 100%, но на практике далеко не каждый метод имеет такие показатели. Однако солидные лаборатории в своей работе используют те методы анализа, чувствительность и специфичность которых наиболее высоки.

Лабораторное обследование проводится в несколько этапов, каждый из которых влияет на достоверность результата. Первый этап называется преаналитический . Он включает в себя подготовку к анализу, взятие биоматериала, его транспортировку в лабораторию и пробоподготовку. Стоит отметить, что именно на этот этап приходится большая часть всех ошибок лабораторных исследований — от 46 до 68%.

Зачастую получив от врача направление на анализ, мы не отдаем себе отчета, насколько важна самостоятельная подготовка к лабораторным обследованиям. Однако существуют строгие правила, которые необходимо знать и выполнять. Например, сдавать кровь на биохимию нужно обязательно в утренние часы, натощак и не курить до процедуры в течение часа, как минимум. Накануне необходимо избегать чрезмерных физических и эмоциональных нагрузок, воздержаться от алкоголя и приема лекарств. На процедуру стоит приходить заранее, без спешки и нервозности. Нужно помнить, что за точность результата несет ответственность не только лаборатория, но и мы сами.

Следующий этап лабораторного обследования — аналитический . Он включает в себя доприборный анализ: добавление в пробу реактивов или красителей, химические реакции, инкубацию, перемешивание, промывание и другие действия с биоматериалом. Затем в большинстве случаев происходит приборный анализ с использованием различной аппаратуры.

Читать еще:  Исследование пса простаты

Финальный этап каждого лабораторного обследования — постаналитический . Лечащий врач получает результаты анализа, интерпретируя которые он может подтвердить диагноз, скорректировать ход лечения, назначить нужные процедуры и лекарства.

В каких случаях необходимо пройти лабораторную диагностику? Чаще всего методы лабораторного обследования применяют для постановки и уточнения диагноза, определения причины состояния пациента (при генетических, инфекционных заболеваниях, отравлениях), характеристики формы и тяжести течения болезни, выбора терапии, подбора оптимальных лекарственных средств, а также для контроля результативности лечения и подтверждения полного излечения. Причем за весь период лечения проведение лабораторных анализов может потребоваться неоднократно.

Лабораторная диагностика в медицине представлена многочисленными методами, количество которых постоянно увеличивается, а качество — повышается. Давайте подробнее рассмотрим лабораторные методы обследования больных, наиболее часто используемые в современной медицинской практике.

Виды лабораторных обследований по типу исследуемого биоматериала

Для проведения лабораторного обследования требуется биологический материал — ткани и выделения человека, содержащие геномную информацию. Наиболее часто в качестве биоматериала используются кровь, моча, кал, мокрота, пункции тканей, мазки и соскобы слизистых оболочек и даже внутренних органов.

Чаще всего в лабораторных условиях исследуется кровь. Этот биоматериал содержит практически всю необходимую информацию о человеке, поэтому служит базой для десятков различных тестов. Наверняка каждый из нас много раз сдавал кровь из пальца для общего анализа крови , с помощью которого определяется уровень гемоглобина, количество тромбоцитов, эритроцитов и лейкоцитов, а также скорость оседания эритроцитов (СОЭ).

Для биохимического анализа берется кровь из вены. Этот анализ показывает состояние внутренних систем организма, уровень гормонов, содержание глюкозы, билирубина, белков, аминокислот и других жизненно важных элементов. Определение уровня различных биохимических показателей требуется при диагностике и лечении патологий эндокринной системы, заболеваний почек, желудочно-кишечного тракта, сердечнососудистой системы, опорно-двигательного аппарата.

Кровь также служит биоматериалом и для более сложных тестов. Например, для анализа на выявление нарушений хромосомного набора человека. Цитогенетическое обследование позволяет выявить количественные (изменение числа хромосом) и структурные аберрации (изменение самих хромосом). Расширенное цитогенетическое обследование представляет возможность рассчитать процент аномальных метафаз, выявить следы действия вредных факторов на геном человека. Анализ имеет важнейшее значение для пациентов с бесплодием и невынашиванием беременности.

Много важных сведений об организме содержит и другой часто используемый биоматериал — моча. Анализ мочи дает представление, прежде всего о функционировании почек, но также и других внутренних органов и систем, позволяет выявить процесс воспаления в мочеполовой системе.

В качестве биоматериала для гистологических исследований используется эпителий внутренних органов и систем, полученный в ходе биопсии. Специалист под микроскопом изучает внутриклеточные структуры в срезе ткани. Этот анализ с высокой точностью определяет наличие раковых клеток, злокачественных новообразований, метастазы соседних органов, внутренние кровоизлияния, тромбозы, воспалительные процессы. Наиболее часто гистология применяется в гинекологии.

Биоматериалом для цитологического исследования служат различные жидкости: мокрота, моча, выделения из молочных желез, материалы, полученные при пункции, соскобы и отпечатки с эрозий, язв, ран, удаленных тканей. В основе анализа — изучение особенностей строения клеток с помощью микроскопа. Цитология незаменима для выявления начальных стадий рака, поскольку она с высокой точностью позволяет установить диагноз доброкачественной или злокачественной опухоли, а также неопухолевых поражений.

Анализы по цели исследования

Иммунологические исследования дают информацию о состоянии различных звеньев иммунитета. Назначение иммунологического обследования необходимо для диагностики и лечения нарушений иммунной системы, аллергии, хронических инфекций, аутоиммунных заболеваний, при развитии злокачественных новообразований, а также при подготовке к операциям или пересадке донорских органов.

Гормональные исследования используются для диагностики эндокринных заболеваний, бесплодия, импотенции, нарушений менструального цикла, а также при проблемах с кожей, волосами, лишним весом. Гормоны, поступая в кровь из желез внутренней секреции, участвуют во всех биохимических процессах организма. Дисбаланс гормонов может привести к серьезным проблемам, поэтому необходимо своевременно начать заместительную лекарственную терапию.

Исследование генетической предрасположенности необходимо для оценки репродуктивного здоровья, иммуногенетики, определения резус-фактора, системы свертывания крови, а также в случаях, когда имеется риск «передачи по наследству» болезней сердечнососудистой системы, желудочно-кишечного тракта, центральной нервной системы, нарушений обмена веществ, онкологических заболеваний, алкогольной и наркотической зависимости.

Диагностика инфекционных заболеваний — важнейшая категория анализов, которая в последние годы приобретает все большее распространение ввиду участившихся угроз планетарного масштаба. Среди инфекций есть немало смертельно опасных, выявление которых на ранней стадии позволит сохранить здоровье и качество жизни. Современные методы диагностики с максимальной точностью выявляют различные инфекции, включая ВИЧ, все виды гепатитов, герпетические инфекции, цитомегаловирус, краснуху, корь, эпидемический паротит, острые кишечные инфекции, ротавирус, вирус папилломы человека, клещевой энцефалит, туберкулез, инфекции, передаваемые половым путем.

Методы лабораторных обследований

Бактериоскопический метод предполагает исследование под микроскопом мазка на флору. Биоматериал для анализа берется из шейки или полости матки, влагалища, мочеиспускательного канала, прямой кишки. Также с помощью данного метода может исследоваться сперма, секрет предстательной железы, мокрота, суставная и другие жидкости организма. Бактериоскопия мазка — недорогой, быстрый и поэтому распространенный метод, позволяющий обнаружить бактерии, грибки и простейшие.

Бактериологический метод исследования позволяет определить наличие в организме человека болезнетворных бактерий. В ходе анализа специалист лаборатории создает так называемый бактериологический посев, то есть помещает биоматериал в питательную среду, которая способствует активному размножению бактерий. Чаще всего биоматериалом для такого исследования выступает кал, слизь из носоглотки и зева, мокрота из бронхов, моча, кровь, спинномозговая жидкость, содержимое очагов воспаления или кист. Этот метод незаменим при диагностике различных инфекционных заболеваний. А также с помощью бактериологического посева можно выяснить, какой антибактериальный препарат лучше воздействует на найденного возбудителя.

Иммунофлуоресцентный анализ направлен на определение качественного и количественного состава антигенов. Метод позволяет выявить в биоматериале присутствие антигенов, характерных для определенных возбудителей или заболеваний. Анализ помогает диагностировать онкологические заболевания на ранней стадии, а также выявить инфекции и наследственные синдромы.

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) — это метод молекулярной диагностики, с помощью которого можно определить возбудителя заболевания даже при самой минимальной концентрации. ПЦР широко используется для диагностики наследственных, инфекционных заболеваний, для установления родства, клонирования генов, выявления мутаций, выделения новых генов.

ПЦР-диагностика является одним из самых точных методов диагностики инфекционных заболеваний. Чувствительность и специфичность ПЦР в диагностике большинства вирусных и бактериальных инфекций достигает 100%.

Серологические методы изучают антитела и антигены в ходе реакций антиген-антитело. Возбудителя определяют с помощью сывороток крови гипериммунизированных животных. Собственно, основная задача серологии — разработка диагностических и лечебных сывороток. Серологические тесты используют при переливании крови, для определения групп крови, для определения источника инфекции, механизма ее передачи и эффективности вакцинации.

Современная медицина находится на таком уровне, что множество болезней, даже самых серьезных, можно вылечить на ранней стадии. Поэтому так важно проводить лабораторное обследование — результаты имеют решающее значение в постановке диагноза.

Ссылка на основную публикацию
Adblock
detector